专利名称：放射免疫偶联物和其用途的制作方法
技术领域：
本发明涉及血液癌症的放射免疫疗法，该放射免疫疗法是利用一种细胞毒性极高的经过放射性标记的单克隆抗体来进行。
背景技术：
针对非霍奇金淋巴瘤(non-Hodgkin lymphoma, NHL)已采用了一种利用经过放射性标记的抗体进行的疗法，并且该疗法是一种目前已获得批准的方法。市场上有两种产品，即，Zevalin 和Bexxar ，并且这两种产品都以CD20抗原为目标(Jacene等人，2007)。免疫治疗剂利妥昔单抗(rituximab) (Rituxan /Mabthera )也以⑶20抗原为目标。针对同一目标的治疗方法所存在的一个问题是，有可能在病程期间发生免疫表型漂移(immunophenotypic drift) (Ngo等人，2009),当在利妥昔单抗疗法中随时间 重复CD20疗法时，或者如果在长期的利妥昔单抗疗法后给予基于CD20的放射免疫疗法(radio immunotherapy, RIT),该免疫表型漂移会引起0)20疗法的作用减弱。很多接受了针对CD20的疗法的患者最终将会出现复发(Buchegger等人，2006 ；Gordon等人，2004)。因此，对于一种在NHL患者体内以除⑶20外的另一种抗原为目标的放射免疫疗法(RIT)存在。在RIT的早期开发过程中，对⑶37和⑶20两种抗原作为目标进行了评估(Press等人，2001)。由此得出结论，以⑶20为目标的RIT更为适合，并且因此放弃了针对⑶37的RIT的开发。因而，在所属领域中已知多种单克隆抗体适用于针对淋巴瘤的RIT中，但以CD20为目标的放射免疫偶联物(radioimmunoconjugate，RIC)优于以CD37为目标的RIC(Press 等人,2001)。近年来，0)37已引起了一些新的关注(Heider等人，2009 ;Grosmaire, 2007),它主要是作为使用嵌合或人源化抗体构建体的免疫疗法的目标。这些研究提出，不要使用常规的鼠类IgG单克隆抗体，因为这些鼠类抗体会诱导患者体内产生人类抗小鼠的抗体(HAMA)，这可能会引起不适，并且降低免疫疗法的功效。在RIT中，常规的鼠类单克隆抗体仍被认为是值得关注的，因为所用蛋白质剂量总体而言较低，而且无需如同免疫疗法同样程度地重复进行治疗。鼠类IgG的清除总体而言也比鼠类IgG的人源化或嵌合型式略快，这一点至少在某些背景下从RIT的全身辐射暴露来讲可能更恰当。应注意的是，Bexxar和Zevalin两者都是基于鼠类抗体。本发明提供抗CD37的鼠类抗体HHl作为放射性同位素的载体。产生该鼠类抗CD37抗体HHl的首个杂交瘤克隆体是在1980年代开发出来的(Smeland等人，1985)，并且数年来，该HHl抗体一直在进行销售，在体外用于免疫组织化学技术中。对于HHl在放射免疫疗法中的生物分布以及细胞的细胞毒性，先前未作评估。因此，当前的研究是着手对HHl在放射免疫疗法中的适用性进行评估。先前利用抗CD37的RIC的临床和临床前研究使用了氯胺T/Iodogen法用131I直接对多个酪氨酸残基进行放射性标记，相比之下，HHl是使用金属放射性核素代替卤素，通过螯合剂进行放射性标记。使用一种已通过螯合剂-连接子进行标记的金属放射性核素可为有利的，因为标记有131I的抗体的使用会使得甲状腺暴露于由RIC释放的不同量的碘。在先前一项旨在评估HHl是否适于制备放射免疫偶联物的研究中，曾将CHX-A-DTPA与HHl偶联，并且用2°5，2°6Bi标记该偶联物，来达到建立体外模型的目的(Henriksen 等人,1997)。对铋与HHl或与抗生蛋白链菌素(streptavidin)的偶联物在细胞系Raji中的摄取情况进行了比较。在铋与抗生蛋白链菌素的偶联物的情形中，细胞曾用生物素化的HHl预先饱和。已发现，当用212Bi或213Bi进行标记时，确保功能性RIC所需的螯合剂数目是一个限制性因素。因此，提出了使用生物素化的HHl来代替基于HHl的RIC。一旦结合于细胞，该生物素化的HHl因而就可以作为经过放射性标记的抗生蛋白链菌素的目标。因此，该项研究提出，由于用发射a -粒子的放射性核素标记的HHl在认为HHl可耐受的螯合剂浓度下的比活性不足以保持足够的结合能力，故该HHl不太有用。 该论文还指出，与a-发射体相比较，￠-发射体将更不适合构建功能性RIC(Henriksen等人，1997),因为其作者指出，由于交叉放射(cross-fire)对于获得足够的效应至关重要，故利用3-发射体的靶向性放射疗法弥散性疾病较差。因此，上文列举的研究提出，在放射免疫疗法中不要使用直接螯合的HH1，而且在基于P -发射体的RIC中也不要使用HHl。发明概述本发明涉及一种结合人类⑶37的放射免疫偶联物，包含鼠类单克隆抗体HH1、一个连接子以及一种放射性核素，该放射性核素选自由以下各项组成的组，即211At、213Bi、212Bi、212Pb、225Ac、227Th、9°Y、186Re、188Re、199Au, 194Ir, 166Ho, 159Gd, 153Sm, 149Pm, 142Pr, 111Ag, 109Pd,77As、67Cu、47Sc 以及 177Lu。在本发明的一个实施方案中，该连接子是一种螯合性连接子，并且该放射性核素是 177Lu。本发明的一个方面涉及一种药物组合物，包含一种本发明的放射免疫偶联物和一种药学上可接受的载体。在本发明的一个实施方案中，本发明的药物组合物包含一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物。在本发明的另一个实施方案中，一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物以CD20为目标。本发明的又一个实施方案涉及一种本发明的药物组合物，用于对表达⑶37抗原的B细胞恶性细胞进行治疗。在本发明的一个实施方案中，该药物组合物是用于治疗非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病。本发明的一个方面涉及本发明的放射免疫偶联物的用途，用于治疗B细胞恶性肿瘤。本发明的一个实施方案涉及本发明的放射免疫偶联物的使用，该放射免疫偶联物是组合或连同另一种疗法一起给予的。在本发明的一个实施方案中，该疗法选自预治疗、化学疗法、单克隆抗体疗法、手术、放射疗法和/或光动力疗法。在本发明的另一个实施方案中，该疗法包含先使用抗CD20和/或抗CD37的单克隆抗体进行预治疗，然后用本发明的放射免疫偶联物进行治疗。本发明的一个方面涉及一种用于对选自非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病的一种B细胞恶性肿瘤进行治疗的方法，包括给予有效量的一种本发明的药物组合物。本发明另一方面涉及一种用于制备本发明的放射免疫偶联物的试剂盒，包含两个或更多个小瓶，其中一个小瓶含有一种偶联物，该偶联物包含与一种鼠类单克隆抗体HHl连接的一种螯合剂；并且一个第二小瓶含有一种放射性核素。本发明的一个实施方案涉及一种本发明的试剂盒，其中这些小瓶中一个或数个的 内含物是经过冻干的或呈一种溶液的形式。在本发明的另一个实施方案中，该放射免疫偶联物是通过对该两个小瓶的内含物进行混合而产生。附图简要说明图I在Raji、Rael以及Daudi 细胞与 111In-HHU111In-利妥昔单抗、125I-HHl 以及 125I-利妥昔单抗一起培养时在洗涤后立即(A)和96小时(B)得到的结合细胞的抗体。图2在与mLu-HHl或mLu-利妥昔单抗一起培养2小时(A)和18小时(B)后结合于Daudi细胞的活性。阻断的细胞是用IOOy g/ml未经过标记的抗体阻断的。图3在洗涤前与mLu-HHl (A)或mLu-利妥昔单抗(B) —起培养2小时的Daudi细胞的生长情况。图4在洗涤前与mLu-HHl (A)或mLu-利妥昔单抗(B) —起培养18小时的Daudi细胞的生长情况。图5在带有Daudi异种移植物的小鼠中通过螯合剂标记111In的HHl的生物分布。图6未经过标记的Daudi细胞、仅用二次抗体标记的Daudi细胞、或者用HH1、0N. 108、IP0. 24或6D263标记的Daudi细胞的FITC柱形图。图7在带有Daudi肿瘤的雌性裸小鼠中mLu-的生物分布。图8对小鼠静脉内(iv)注射Daudi细胞的疗法。利用50和100MBq/kg mLu_HHl、冷的HH1、冷的利妥昔单抗以及NaCl治疗的小鼠的存活率。发明详细说明本发明涉及抗体HHl在放射免疫疗法中的使用。一种金属放射性核素、连接子与抗⑶37的单克隆抗体的组合出人意料地显示，经过放射性标记的HHl在一个异种移植物/裸小鼠模型中具有一种相关的生物分布和肿瘤摄取。这个重要信息表明了在放射免疫疗法中的适用性。放射免疫偶联物本发明出人意料地显示，放射免疫偶联物mLu-HHl对弥散性肿瘤细胞展现出一种显著的细胞毒性，并且在给定剂量下，mLu-HHl针对这些肿瘤细胞的细胞毒性高于177Lu-利妥昔单抗。这一发现是出乎意料的，因为每一细胞结合更多的放射物，并且结合的放射性核素的保留度类似于或优于mLu-利妥昔单抗。 该传授内容与本领域中的常识相反，本领域的常识是对于放射免疫疗法而言，抗⑶20抗体优于抗⑶37抗体。此外，本研究与先前观念的不同之处在于，对于￠-发射体，无法在弥散性细胞中获得的交叉放射对于获得足够的作用将至关重要(Henriksen等人，1997)。出现所观察的效应的原因尚不清楚。由利用不同剂量的未经过标记的HHl和利妥昔单抗进行的实验得到的数据在所用生长检验中并未指示由这些未经过标记的抗体所产生的任何作用。一个可能的解释可以是，CD37与CD20相比较，具有极低抗原密度的细胞更少，即使平均起来，CD20在所用细胞上具有更为强烈的表达。保留度数据因⑶37的内化而无法呈现更好的保留度，这将是另一个可能的解释，因为据报导，关于⑶37抗原存在一些内化现象(Press等人，2001)。因此，本发明涉及一种结合人类CD37的放射免疫偶联物，包含鼠类单克隆抗体HH1、一个连接子以及一种放射性核素，该放射性核素选自由以下各项组成的组，即211At、213Bi、212Bi、212Pb、225Ac、227Th、9°Y、186Re、188Re, 199Au, 194Ir, 166Ho, 159Gd, 153Sm, 149Pm, 142Pr, 111Ag,109PdJ7As, 67Ciu47Sc 以及 177Lu。在本发明的一个实施方案中，该连接子是一种螯合性连接子。在本发明的另一个实施方案中，该放射性核素是mLu。在又一个实施方案中，该放射性核素是另一种￠-发射体或是一种Ct-发射体。根据体外数据，本发明提出，经过放射性标记的HHl与⑶37抗原的结合比经过放射性标记的利妥昔单抗与CD20抗原的结合更有效，即，该经过放射性标记的HHl用更少的循环抗体就达到与该抗原的最大结合(表2，图2)。它达到最大结合所需的时间也更少(图2)。这些也将是重要的体内特征，因为这意味着肿瘤细胞甚至在较低的循环抗体浓度下也能截留RIC，而循环抗体浓度较低的情形可能在较不易达到的实体肿瘤区域以及位于正常组织的远端区域中的多个单一肿瘤细胞和微转移中出现。这一点与先前数据明显不同，先前的数据曾指出，利用另一种抗CD37抗体使抗原饱和并且获得有利的生物分布所需的抗体浓度高于HHKBernstein等人，1990)，也高于一种抗CD20抗体(Press等人,1993)。此外，本发明还显示，与一组三种不同的抗⑶37抗体相比较，HHl具有一些不同的抗原结合特性，不过所有这些抗体实质上都结合于同一表位。阻断实验(S卩，使用以未经过标记的抗体预先饱和的细胞进行的实验)显示，HHl将阻止活细胞上的⑶37结合于经过放射性标记的HHl，实质上优于其他三种抗⑶37抗体。在对多种经过放射性标记的抗体进行比较的一项细胞检验中，HHl显示的免疫活性分数比其他三种抗体高得多。免疫活性分数是指在存在无限制的过量抗原的情况下能结合抗原的抗体的分数。不同的抗体在经历标记程序后，可以具有不同的保持免疫活性的能力。实例6实验IV的表5中的结果显示，HHl所保持的免疫活性高于三种可商购抗体的免疫活性。另一方面，多项免疫组织化学分析显示，这三种抗体使由经过石蜡包埋的固定的肿瘤样品得到的组织切片染色，而HHl未能如此。抗体抗原相互作用的差异无法通过流式细胞术来检测。HHl与这三种其他抗⑶37抗体的流式细胞术柱形图是相似的(图6)。总体来说，这些数据显示，HHl具有一种重要的个体性抗原相互作用，这一相互作用在几个方面上无法由利用其他抗CD37抗体的研究预测出来。 这里描述的具有强细胞毒性特性的新颖抗CD37放射免疫偶联物由鼠类单克隆抗体HHl、一种螯合性连接子以及P -发射体mLu组成。该放射性核素可以通过以下步骤附接到抗体首先使一种双官能螯合剂，例如p-SCN-bn-DOTA (Macrocyclics, Tx, USA),与该抗体反应,随后进行纯化以除去未偶联的螯合剂，接着使螯合剂抗体偶联物与该放射性核素反应，随后进行纯化以除去任何未偶联的放射性核素。作为替代方案，可以先将螯合剂与放射性核素组合，随后与抗体偶联。螯合性连接子(例如，如p-SCN-bn-DOTA)可用于使其他金属放射性核素按与关于177Lu所述类似的方式与HHl偶联。具有足够的络合能力以及允许与一种蛋白质或肽直接或间接偶联的一个官能团的任何类型的连接子都可以使用。这些连接子的实例描述于文献中(例如，Brechbiel, 2008 ；Liu, 2008)。一些有用的实例是双官能的环状螯合剂，如p-SCN-bn-DOTA、DOTA-NHS-酯；双官能的线性螯合剂，如p-SCN-Bn-DTPA 和 CHX-A" -DTPA。本发明中的多种放射性核素将优选通过使用双官能螯合剂与一个目标分子偶联。这些双官能螯合剂可以是环状、线性或分支状螯合剂。特别应提到的是聚氨基聚酸螯合剂，这些螯合剂包含一个线性、环状或分支状聚氮杂烷烃主链，其中有多个酸性(例如，羧基烷基)基团附接在该主链氮上。适合的螯合剂的实例包括DOTA衍生物，如对异硫氰酸基苯甲基-1，4，7，10-四氮杂环十二烷-I，4，7，10-四乙酸(p-SCN-Bz-DOTA)和DTPA衍生物，如对异硫氰酸基苯甲基-二亚乙基三胺五乙酸(p-SCN-Bz-DTPA)，前者是环状螯合剂，后者是线性螯合剂。络合部分的金属化可以在该络合部分与目标部分偶联之前或之后进行。如果螯合剂是在进行放射性标记之前与抗体偶联，则进行放射性标记的程序在所用时间等方面一般将更适宜。使用与抗体附接的螯合剂来制备经过放射性标记的偶联物的原理在(例如)Liu, 2008中有更为全面的描述。因此，可以使用HHl来制备多种放射免疫偶联物，这些放射免疫偶联物具有不同的辐射特性和有效半衰期。举例来说，可以制备由鼠类单克隆抗体HH1、一个螯合性连接子以及一种发射3粒子或发射a粒子的放射性核素(包括但不限于177Lu、211At、213Bi、212Bi、212Pb、225Ac、227Th、90Y^186Re,188Re,199Au,194Ir,166Ho, 159Gd、153Sm、149Pm、142Pr、niAg、1(l9Pd、77AS、67Cu、47SC)组成的抗CD37放射免疫偶联物，并且使用这种放射免疫偶联物来制备多种药物制剂，并用于多种治疗应用中。药物组合物基于HHl的一种放射免疫治疗产品典型地将会以一种药物组合物的形式提供，该药物组合物是由根据以上描述的一种放射性核素通过一种螯合剂与溶解于一种缓冲溶液中的鼠类单克隆抗体HHl连接而组成，这在很大程度上保持了放射免疫偶联物的化学完整性，并且将其输注到患者体内在生理学上是可接受的。
因此，本发明的一个方面涉及一种药物组合物，包含一种本发明的放射免疫偶联物以及一种药学上可接受的载体和/或赋形剂。可接受的药物载体包括但不限于无毒缓冲剂、填充剂、等渗溶液等。更具体地说，该药物载体可以是(但不限于)生理盐水(0. 9%)、二分之一生理盐水(half-normalsaline)、林格氏乳酸盐(Ringer，s lactate)、5%右旋糖、3. 3%右旋糖/0. 3%盐水。生理学上可接受的载体可以含有一种放射分解性稳定剂，例如抗坏血酸，这种稳定剂能在储存和运输期间保持放射性药物的完整性。本发明的一个实施方案包含本发明的药物组合物和一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物。抗体包括但不限于利妥昔单抗、依帕珠单抗(Epratuzumab)、L19、F8、F16、加利昔单抗(Galiximab)、托利珠单抗(Toralizumab)、阿来组单抗(Alemtuzumab)、奥法木单抗(Ofatumumab)、维妥珠单抗(Veltuzumab)、阿托珠单抗(Afutuzumab)、托西莫单抗(Tositumomab)、利图斯(Reditux)以及替伊莫单抗(Ibritumomab)。放射免疫偶联物包括但不限于Zevalin和Bexxar。在本发明的另一个实施方案中，一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物以CD20为目标。抗体包括但不限于利妥昔单抗、维妥珠单抗、奥法木单抗、阿托珠单抗、托西莫单抗、利图斯以及替伊莫单抗。放射免疫偶联物包括但不限于Zevalin和Bexxar。本发明的又一个实施方案涉及一种本发明的药物组合物，用于对表达⑶37抗原的B细胞恶性细胞进行治疗。在本发明的一个实施方案中，该药物组合物是用于治疗非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病的。序列一致性与一般定义一样，“一致性”在这里定义为分别在核苷酸或氨基酸水平上的多个基因或多种蛋白质之间的序列一致性。因此，在本文中，“序列一致性”是在氨基酸水平上多种蛋白质之间一致性的一种量度，以及在核苷酸水平上多个核酸之间的一致性的一种量度。蛋白质序列一致性可以通过在比对多个序列时比较每一序列中某一指定位置的氨基酸序列来确定。类似地，核酸序列一致性可以通过在比对多个序列时比较每一序列中某一指定位置的核苷酸序列来测定。为了测定两个核酸序列或两个氨基酸的一致性百分比，出于进行最佳比较的目的，对这些序列进行比对(例如，可以在第一个氨基酸序列或核酸序列中引入多个空隙，以便与第二个氨基酸或核酸序列达到最佳比对)。接着对多个相应氨基酸位置或核苷酸位置的氨基酸残基或核苷酸进行比较。当占据第一个序列中某一位置的氨基酸残基或核苷酸与第二个序列中相应位置的氨基酸残基或核苷酸相同时，则这些分子在该位置是一致的。两个序列之间的一致性百分比会随这些序列所共有的一致位置的数目而变化(即，一致性％= —致位置的数目/位置(例如重叠的位置)的总数X 100)。在一个实施方案中，这两个序列具有相同长度。可以手动比对这些序列，并且计算出一致核酸或氨基酸的数目。作为替代方案，可以使用一种数学算法比对两个序列，以测定一致性百分比。此种算法被并入NBLAST和XBLAST程序中。BLAST核苷酸检索可以用NBLAST程序进行，总分=100，字长=12，由此获得 与本发明的核酸分子同源的多个核苷酸序列。BLAST蛋白质检索可以用XBLAST程序进行，总分=50，字长=3，由此获得与本发明的蛋白质分子同源的多个氨基酸序列。为了进行带空隙的比对以达到比较的目的，可以利用Gapped BLAST。作为替代方案，可以使用PSI-Blast来进行一种迭代检索法，检测多个分子之间的远缘关系。当利用NBLAST、XBLAST以及Gapped BLAST程序时，可以使用相应程序的默认参数。参见http://www. ncbi. nlm. nih. gov。作为替代方案,可以在对多个序列进行比对之后,例如通过BLAST程序在EMBL数据库中来计算序列一致性(www. ncbi. nlm. gov/cgi-bin/BLAST) 总体来说，可以使用有关(例如)“计分矩阵”和“空隙罚分”的默认设置来进行比对。在本发明的上下文中，BLASTN和PSI BLAST的默认设置可为有益的。两个序列之间的一致性百分比可以在允许有空隙或不允许有空隙的情况下，使用与上文所述类似的技术测定。在计算一致性百分比时，只对精确匹配计数。本发明的一个实施方案涉及一种分离的核酸，包含与HHl抗体的VH序列(SEQ IDNO: I)和/或VL序列(SEQ ID N0:3)共有80%序列一致性的一个序列。本发明的一个实施方案涉及一种分离的核酸，包含一个序列，该序列带有HHl抗体的 VH 序列(SEQ ID NO: I)和 / 或 VL 序列(SEQ ID N0:3)。在本发明的另一个实施方案中，该分离的核酸包含与HHl抗体的VH序列(SEQ IDNO: I)和/或VL序列(SEQ ID NO: 3)共有至少90%序列一致性，如90% —致性、91%—致性、92% —致性、93% —致性、94% —致性、95% —致性、96% —致性、97% —致性、98% —致性或99% 一致性的一个序列。本发明的另一个实施方案涉及一种抗体，包含与HHl抗体的VH序列(SEQ IDNO: 2)和/或VL序列(SEQ ID NO:4)共有80%序列一致性的一个多肽序列。本发明的另一个实施方案涉及一种抗体，包含一个多肽序列，该多肽序列带有HHl抗体的 VH 序列(SEQ ID NO:2)和 / 或 VL 序列(SEQ ID N0:4)。在本发明的另一个实施方案中，该抗体包含与HHl抗体的VH序列(SEQ ID N0:2)和/或VL序列(SEQ ID NO:4)共有至少90%序列一致性，如90% —致性、91% —致性、92% —致性、93% —致性、94% —致性、95% —致性、96% —致性、97% —致性、98% —致性或99% —致性的一个序列。
遗传变异遗传变异是由基因中核苷酸的碱基次序发生变化而引起的。这种变化使这些基因发生突变，随后使这些基因所编码的蛋白质发生突变。这些突变可以是有义突变或错义突变，或者是取代。本发明的一个实施方案涉及HHl单克隆抗体的VH链(SEQ ID NO: I)和/或VL链(SEQ ID N0:3)的分离的核酸序列，该分离的核酸序列包含至少50个，如20个，如10个，如5个，如4个，如3个，如2个，如I个有义突变。本发明的另一个实施方案涉及HHl单克隆抗体的VH链(SEQ ID N0:1)和/或VL链(SEQ ID NO:3)的分离的核酸序列，该分离的核酸序列包含0到50个，如I到50个，如0到20个，如I到20个，如0到10个，如I到10个，如0到5个，如I到5个，如3个，如I
·个有义突变。错义突变(一类非同义突变)是一种点突变，在这种突变中，单一核苷酸发生改变，产生一种编码不同氨基酸的密码子(将一种氨基酸变为一个终止密码子的突变被认为是无义突变，而不是错义突变)。错义突变可以使所得到的蛋白质没有功能性。然而，并非所有的错义突变都导致可观的蛋白质变化。一个氨基酸可以用化学特性极为相似的一个氨基酸替代，在这种情况下，蛋白质仍能够正常起作用；这被称为中性、“安静(quiet)”或保守突变。作为替代方案，可以在蛋白质的一个区域中进行氨基酸取代，这种取代不会明显影响蛋白质的二级结构或功能。当一个氨基酸可能由多于一个密码子编码(所谓的“简并编码，，)时，密码子中的突变可能不会在翻译中产生任何变化；这种突变将是一种同义突变(一种沉默突变形式)，而不是一种错义突变。本发明的一个实施方案涉及一种抗体，包含HHl单克隆抗体的VH链(SEQ IDNO: I)和/或VL链(SEQ ID NO: 3)的一个多肽序列，该多肽序列包含至少50个，如20个、如10个、如5个、如4个、如3个、如2个、如I个错义突变。本发明的一个实施方案涉及一种抗体，包含HHl单克隆抗体的VH链(SEQ IDNO: I)和/或VL链(SEQ ID NO:3)的一个多肽序列，该多肽序列包含0到50个，如I到50个，如0到20个，如I到20个，如0到10个，如I到10个，如0到5个，如I到5个，如3个，如I个错义突变。保守取代是用具有大体上类似特性的一个氨基酸取代另一个氨基酸，以致整体功能性很可能不受明显影响的一种取代。在本发明的另一个实施方案中，是错义突变、保守突变或取代。本发明的又一个实施方案涉及一种分离的核酸序列或一种多肽序列，与HHl的可变重链(SEQ ID N0:2)和/或可变轻链(SEQ ID N0:4)序列具有80%序列一致性，其中序列变异是保守取代。在本发明的另一个实施方案中，序列一致性是80% —致性，如90% —致性、91%—致性、92% —致性、93% —致性、94% —致性、95% —致性、96% —致性、97% —致性、98% —致性或99% 一致性，并且序列变异是保守取代。为了对放射性标记的步骤进行改进，宜将额外的赖氨酸引入(例如)HH1的Fe部分中。此举可以减小将结合赖氨酸的螯合剂附接到该抗体的抗原结合位点中的几率，由此降低在进行放射性标记期间损害免疫活性的风险。用于将赖氨酸引入(例如)HHl的Fe部分中的方法在本领域中是已知的，例如由Hemminki 等人,1995 获知。本发明的一个实施方案涉及本发明的放射免疫偶联物，该放射免疫偶联物已在HHl 的 Fe 部分中用 10 个 Lys(如 8 个 Lys^n 6 个 Lys^n 5 个 Lys^n 4 个 Lys^n 3 个 Lys、如2个Lys^n I个Lys)进行了修饰。治疗
根据本发明的药物溶液的治疗应用可以是对表达CD37抗原的恶性细胞进行治疗,包括但不限于非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病。其他应用可以是治疗自体免疫疾病和治疗移植相关性反应。该疗法可以基于(但不限于)￠-粒子的辐射或a-粒子的辐射，或者这两者的一个组合。该疗法可以作为单药疗法给予，或者与其他疗法，优选标准治疗方法组合来给予。这些其他疗法可以是预治疗、手术、化学疗法、免疫疗法、光动力疗法、放射免疫疗法，或者这些疗法中两种或多种的一个组合。给予是指静脉内输注或静脉内注射。更具体地说，本发明的放射免疫偶联物可以通过连接到一个滴注器的一个周边导管直接给予到一条静脉中，该滴注器以防止空气栓塞，并且允许对流入患者体内的速率进行估算。在一个实施方案中，该放射免疫偶联物可以按一种重复的方式给予。在本发明的另一个实施方案中，该放射免疫偶联物可以按一种重复的方式，但用多种不同的放射性核素给予，例如，可以在3 -放射免疫疗法之后进行a-放射免疫疗法，或反之亦然。本发明的一个方面涉及本发明的放射免疫偶联物的用途，用于治疗B细胞恶性肿瘤。本发明的一个实施方案涉及本发明的放射免疫偶联物的使用，该放射免疫偶联物是组合或连同其他疗法一起给予。在本发明的一个实施方案中，其他疗法选自预治疗、化学疗法、单克隆抗体疗法、手术、放射疗法和/或光动力疗法。在本发明的另一个实施方案中，其他疗法是骨髓移植或干细胞移植和/或疗法。本发明的另一个实施方案包含先使用抗CD20和/或抗CD37的单克隆抗体进行治疗性预治疗，然后用本发明的放射免疫偶联物进行治疗。本发明的一个方面涉及一种用于对选自非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞的一种B细胞恶性肿瘤进行治疗的方法，包括给予有效量的本发明的药物组合物。在本发明的一个实施方案中,抗体剂量是每位患者I到IOOOmg,更优选每位患者5到50mg，并且mLu的量为每公斤体重I到200MBq，更优选为每公斤体重10到lOOMBq。试剂盒本发明的一个方面涉及一种用于制备本发明的放射免疫偶联物的试剂盒，包含两个或更多个小瓶，其中一个小瓶含有一种偶联物，该偶联物包含与一种鼠类单克隆抗体HHl连接的一种螯合剂；并且一个第二小瓶含有一种放射性核素。一个试剂盒可能需要进行一些程序，例如在输注前进行放射性标记和/或纯化。本发明的一个实施方案涉及一种本发明的试剂盒，其中一个或数个小瓶的内含物是经过冻干的或是呈一种溶液的形式。通过将两个小瓶的内含物混合以产生放射免疫偶联物，将得到最终产物。因此，在本发明的另一个实施方案中，该放射免疫偶联物是通过将两个小瓶的内含物混合来产生。此产物可能需要在使用前进行纯化。实例 实例I-对HHl进行放射性标记碘化根据制造商的描述，使用预先涂有I0D0GEN的碘化管(Pierce, Rockford, IL),通过间接碘化法,利用125I对抗体进行标记。 用111In和mLu进行标记首先，使抗体与一种螯合剂(p-SCN-Bn-DTPA或p-SCN-Bn-DOTA )反应。将DTPA或DOTA螯合剂按5:1的比率溶解于0.05M HCl中，随后加入该抗体中，通过用碳酸盐缓冲液洗涤，将其PH调到约8。接着再次检查pH，并且在必要时加以调整。在室温下，将该溶液振荡60分钟，随后通过加入50 u I 200mM甘氨酸溶液(每毫克抗体)来终止反应。为了除去游离的螯合剂，用PBS (PAA)将经过偶联的抗体洗涤4到5次，接着通过用乙酸铵洗涤，将调到pH 5。然后，将111In或177Lu (Perkin Elmer, Boston, Ma，USA)加到0. 5mg DOTA-Ab中，并在42° C下振荡I小时。最后,通过在一个凝胶过滤柱(例如SephadexG-25PD10，来自GE health ;或类似凝胶柱)上洗脱来纯化产物。总标记产率在17%到63%间变动。使用淋巴瘤细胞和一种经过改进的Lindmo法来测量放射免疫偶联物的品质。使用每毫升达108个细胞的细胞浓度来补偿111In-偶联物的最适度的比活性。对于125I-偶联物(具有更高的比活性)，使用每毫升达4X IO7个细胞的细胞浓度就已足够。这些放射免疫偶联物的免疫活性和比活性可以参见表I。实例2-结合参数利用一步曲线拟合方法(Dahle等人2007)，测定缔合速率常数ka、平衡解离常数Kd以及结合位点的平均数目Bmax。对HHl和利妥昔单抗针对Raji、Rael以及Daudi细胞三种不同的淋巴瘤细胞系的结合参数进行测量(表2)。随时间和抗体浓度的变化来测量特异性结合，并且使用缔合速率常数ka、平衡解离常数Kd以及结合位点的平均数目Bmax作为参数，将描述抗原-抗体络合物的净形成速率的差分方程的解与实验数据点相拟合。使用每毫升五百万个细胞、4种浓度的标记有125I的抗体(100ng/ml、1000ng/ml、5000ng/ml以及10000ng/ml)以及7个培养时间点(5分钟、10分钟、20分钟、30分钟、I小时、I. 5小时以及2小时)。培养后，用PBS将细胞洗涤两次，随后在一个Y计数器中进行计数。实例3-结合细胞的抗体的保留度在将Raji、Rael 和 Daudi 细胞与 111In-HHU111In-利妥昔单抗、125I-HHl 和 125I-利妥昔单抗一起孵育后，对洗涤后立即和洗涤后96小时的时候与细胞结合的抗体的保留度进行测量(图I)。 在含有10%胎牛血清、1%L-谷氨酰胺和1%青霉素/链霉素的I mlRPMI 1640培养基中，将一百万个细胞与I y g/ml标记有125I或标记有111In的HHl或利妥昔单抗一起孵育I小时，用培养基洗涤两次，并且再孵育4天。在洗涤后立即(

图1A)以及在培养4天后(图1B)对结合细胞的活性进行测定，该测定是通过测量细胞数目(Vi细胞活力分析仪(Vi CellViability Analyzer), Beckman Coulter, Fullerton, CA, USA),并且利用一种经过校准的Y 检测器(Cobra II 自动 Y 检测器，Packard Instrument Company, Meriden, CT, USA)测量放射物的量来进行。实例4-在体外用mLu-HHl或mLu-利妥昔单抗治疗淋巴瘤细胞实验I : mLu-HHl结合于Daudi细胞将Iml的Daudi细胞悬浮液(一百万个细胞/ml)播种于24个管中，并且用IOOii g/ml的HHl或利妥昔单抗阻断半数的管，并在37° C下孵育30分钟。随后，向每一个管中加A 177Lu-HHl或mLu-利妥昔单抗，达到0、1、2. 5、5、10或20 y g/ml的最终浓度，并且再在37° C下进行孵育。mLu-HHl的比活性为91. ekBq/yg，并且mLu-利妥昔单抗的比活性为 136.6kBq/U g。在孵育期间，利用一种Y检测器(Cobra II自动、检测器,Packard InstrumentCompany)测量增加的活性量。2小时后，对半数的细胞进行洗涤，并且对结合细胞的活性进行测量(图2A)，同时将另外一半的细胞孵育过夜(18小时)，之后进行洗涤以及结合细胞的活性的测量。在2小时的孵育后，与HHl —起孵育的细胞和与利妥昔单抗一起孵育的细胞之间没有差异，而在18小时的孵育后，与利妥昔单抗一起孵育的细胞的结合细胞的活性是与HHl 一起孵育的细胞的两倍(图2)。表3和表4指出，与利妥昔单抗相比较，经过放射性标记的HHl使抗原饱和更快并且抗体浓度更低。这两种放射免疫偶联物(RIC)的非特异性结合看起来类似，并且该非特异性结合随着培养基中RIC浓度的增加而增加。利妥昔单抗特异性结合mLu的最大数目是HHl的大约两倍。然而，在lug/ml剂量下，特异性结合的放射性原子的数目几乎没有差异。实验II :与177Lu-IgG 一起孵育2小时细胞生长数据如同实验I，将Daudi细胞与放射免疫偶联物一起孵育(图2A)。通过将来自每一个管的50，000个细胞播种于六个12孔板中的三个孔中，来测量在与177Lu-HHl或177Lu-利妥昔单抗一起孵育2小时后Daudi细胞的生长情况。使用自动成像系统(Clone Select Imager, Gentix Ltd, Hampshire, UK)测量在接下来 14 天中数个时间点的细胞量。未经过标记的抗体单独对细胞生长没有影响。然而，用mLu-抗体处理过的阻断的细胞的生长明显不如未处理过的对照细胞快，这表明未结合的mLu-抗体或未特异性结合的mLu-抗体对细胞具有影响(图3)。用mLu-抗体处理未被阻断的细胞使得用10 u g/ml 177Lu-HHl处理的细胞的生长延迟出现44%的增加(图3A)，并且使得用10 u g/ml mLu-利妥昔单抗处理的细胞的生长延迟出现31%的增加(图3B)。
对于用20y g/ml进行处理，这两种抗体之间的差异甚至更大，因为用mLu-HHl处理过的细胞不存在再生长。这一结果是出乎意料的，因为这些细胞都是用相同量的抗体进行标记的(图2A)。实验III :与mLu-IgG —起孵育18小时细胞生长数据如同实验I，将Daudi细胞与放射免疫偶联物一起孵育(图2B)。通过将来自每一个管的50，000个细胞播种于六个12孔板中的三个孔中，来测量在与177Lu-HHl或177Lu-利妥昔单抗一起孵育18小时后Daudi细胞的生长情况。使用自动成像系统(CloneSelect Imager, Gentix Ltd, Hampshire, UK),测量在接下来14天中的数个时间点的细胞量。未经过标记的抗体单独对细胞生长没有影响。由于与放射免疫偶联物在培养基中孵育的时间增加了16小时，本实验(图4)中对用177Lu-抗体处理过的阻断的细胞的细胞生长抑制作用大于实验II中的情形(图3)。用mLu-抗体处理未阻断的细胞使得用2. 5 u g/ml 177Lu-HHl处理过的细胞的生长延迟出现了 107%的增加(图4A)，并且使得用2. 5 u g/ml mLu-利妥昔单抗处理过的细胞的生长延迟出现了 52%的增加(图4B)。这一结果是出乎意料的，因为在18小时的孵育后，标记有mLu-利妥昔单抗的细胞的结合细胞的活性是标记有mLu-HHl的细胞的两倍(图2B)。 实例5-HH1的生物分布用在研究开始时带有32-256mm3尺寸的Daudi异种移植物的BALB/c-裸(nu/nu)小鼠来研究经过mIn标记的HHl的生物分布。使用pSCN-Bz-DOTA作为一种双官能螯合剂，与放射性核素络合，并且将该放射性核素附接到抗体，由此进行放射性标记(参见实例I)。通过对每只动物的尾静脉注射100 u I溶液来给予这些制剂。在每只动物中注射120kBq的活性物。每一时间点使用五只动物。在注射后的不同时间点，在实施颈椎脱白法后进行尸体解剖。测定各组织样品的重量，并且借助一个经过校准的 Y 检测器(Cobra II 自动 Y 检测器，Packard Instrument Company,Meriden, CT, USA)来测量mIn。在这些测量程序中，使用注射物的样品作为参照物。带有Daudi异种移植物的小鼠在注射后24小时的111In-HHl摄取情况以及在正常组织中的生物分布提供于图5中。经过放射性标记的抗体具有一种相关的肿瘤靶向性和生物分布。螯合剂-偶联物111In-HHl在体内显示出良好的稳定性。实例6-HH1与三种其他抗⑶37的抗体的比较实验I :抗⑶37的抗体针对经过放射性标记的HHl的抗原阻断能力为了测试HHl抗原相互作用是否能被其他抗⑶37的抗体阻断，通过将Daudi细胞与HH1、0. N. 108、IP0-24或6D263抗体一起预孵育来进行阻断。将Daudi细胞(二百万个/毫升)与HH1、0.N. 108、IP0-24或6D263 (20 y g/ml) —起孵育15分钟，并且加入经过125I标记的HHl抗体，并且孵育I小时。之后，对这些细胞进行离心，并且洗涤3次，并使用一个X射线/ Y计数器对上清液中的活性物以及对细胞团进行计数。与被HHl阻断的细胞相比较，标记有125I的HHl的结合分数分别比被0. N. 108、IP0-24或6D263阻断的细胞高48%、44%和51%。因此，用HHl实现的125I-HHl对抗原结合的阻断作用优于这三种其他抗体，这表明抗原相互作用存在某些差异。总之，与一组三种其他抗⑶37的单克隆抗体相比较，HHl具有明显不同的抗原结合特性。实验II :抗体结合于用石蜡包埋的淋巴瘤组织样品为了对HHl与三种可商购的⑶37抗体结合于经过固定的淋巴瘤样品的能力进行比较，将来自多位淋巴瘤患者的活体检查样品固定于福尔马林(formalin)中，用石蜡包埋，并且切割成多个IOiim的切片，安放到物镜上。用抗体HHl、IP0. 24、0N. 108和6D263对这些样品进行标记，并且使用兔抗小鼠多克隆抗体和过氧化物酶染色来检测所进行的标记的程度。抗体IP0. 24和0N. 108对这些淋巴瘤样品进行的标记最强。6D263抗体标记的样品略弱。HHl抗体对这些切片的标记不明显。因此，可以得出结论，由于HHl不结合，而三种其他抗⑶37的抗体进行结合，故HHl具有一种明显不同的抗原相互作用。 实验III :用HH1、IP0. 24、0N. 108和6D263抗体进行的流式细胞术为了调查通过不同⑶37抗体对比通过HHl检测的抗原表达的差异，用含有5%胎牛血清的RPMI 1640培养基洗涤Daudi细胞两次，并且在冰上，在含有10% FCS的0. 2ml培养基中用10 u g/ml的一次抗体HH1、IP0. 24,0N. 108以及6D363进行标记，持续0. 5小时。随后，用含0. 25%FCS的PBS将这些细胞洗涤两次，并且在冰上，用标记有FITC的多克隆兔抗小鼠IgG Fab'2 (按1:20稀释)进行标记(图6)，持续0. 5小时。通过在流式细胞仪中用488nm激光激发，来检测FITC标记发出的荧光。使用前向散射、侧向散射和碘化丙啶信号排除死亡的细胞和双联体(doublet)。各种⑶37抗体的不同FITC柱形图间没有明显变化(图6)。总之，HHl与三种其他抗CD37的抗体IP0. 24,0N. 108以及6D363产生相似的流式细胞术柱形图。实验IV =HHl以及三种可商购抗⑶37的抗体的结合分数为了对HHl的结合分数与O.N. 108、IP0-24或6D263抗体的结合分数进行比较(Santa Cruz,生物技术(Biotechnology)),使用 Daudi 细胞。用 HH1、0. N. 108、IP0-24 或6D263抗体(500ii g/ml)阻断细胞悬浮液(表明抗原大量过量)，持续15分钟，以引起抗体的非特异性结合，这些细胞悬浮液是由六千万个Daudi细胞于含有5%胎牛血清的0. 2ml RPMI1640培养基中组成的。其他平行实验未被阻断。随后，加入经过125I 标记的 HH1、0.N. 108、IP0-24 或 6D263 抗体(5-10 ng/ml)，并且在轻微振荡下，在4° C下将这些细胞孵育2小时。之后，对这些细胞进行离心，并且用含1%FCS的PBS洗涤2次。将细胞团转移到多个洁净的管中，并且使用一个Y计数器进行计数。测定的结合分数是未被阻断的小瓶和阻断的小瓶的活性与增加的活性的差异。HHl显示出的结合分数比其他CD37抗体的结合分数高得多(表5)。总之，当按类似方式对抗体进行放射性标记时，HHl所显示的针对活细胞的免疫活性比IP0. 24,0N. 108以及6D363高得多。这一结果表明，HHl具有与这三种其他抗体不同的抗原相互作用。实例7 -低链和重链可变区的DNA和氨基酸序列HHl抗⑶37抗体的可变区的基因和蛋白质序列如下VHa CD37的基因序列对应于SEQ ID NO: I并且VHa CD37的蛋白质序列对应于SEQID N0:2。VH a CD37gagatccagctgcagcagtctggacctgagctggtgaagcctggggcttcagtgaaggtaEIQLQQSGPELVKPGASVKV
tcctgcaaggcttctggttactcattcactgactacaacatgtactgggtgaagcagagcSCKASGYSFTDYNMYffV KQ ScatggaaagagccttgagtggattggatatattgatccttacaatggtgatactacctacHGKSLEffIGYIDPYNGD TT YaaccagaagttcaagggcaaggccacattgactgttgacaagtcctccagcacagccttcNQKFKGKATLTVDKSSSTAFatccatctcaacagcctgacatctgaggactctgcagtctattactgtgcaagatcccct
IHLNSLTSEDSAVYYCARSPtatggtcactatgctatggactactggggtcaaggaacctcagtcaccgtctcctcaYGHYAMDYffGQGTSVT VS SVLa CD37的基因序列对应于SEQ ID NO: 3，并且VL a CD37的蛋白质序列对应于SEQ ID NO:4。VLaCD37gacattgtgatgacccagtctcacaaactcttgtccacatcagtaggagacagggtcagcDIVMTQSHKLLSTSVGDRVSatcacctgcaaggccagtcaggatgtgagtactgctgtagactggtatcaacagaaaccaITCKASQDVSTAVDffYQ QK PggacaatctcctaaactactgattaactgggcatccacccggcacactggagtccctgatGQSPKLLINffASTRHTG VP DcgcttcacaggcagtggatctgggacagattatactctcaccatcagcagtatgcaggctRFTGSGSGTDYTLTISSMQAgaagacctggcactttattactgtcgacaacattatagcactccattcacgttcggctcgEDLALYYCRQHYSTPFTFGSgggacaaagttggaaataaaaGTKLEIK该氨基酸序列明显不同于结合⑶37的抗体AO的氨基酸序列(Heider等人，2009)。HHl的与AO的可变轻链之间的重叠部分达到56%，而可变重链之间的重叠部分是 82%。实例8-将经过放射性标记的HHl结合到用⑶20抗体利妥昔单抗饱和的细胞上。背景非霍奇金淋巴瘤患者常常接受利妥昔单抗作为一种标准疗法。如果能够对这些患者使用经过放射性标记的HH1，那么即使他们正在经历利妥昔单抗疗法，也将是有益的。表达⑶20和⑶37两种抗原的Daudi淋巴瘤细胞被用作一种模型。方法用过量(100 U g/ml)的利妥昔单抗对Daudi淋巴瘤细胞(3，300, 000个/0. 5ml)进行预处理和共同处理，持续五分钟，之后加入Iu g标记有125I的HHl，或在未进行利妥昔单抗预处理情况下加入给定的标记有125I的HH1。为了测定125I-HHl的非特异性结合，使用与上文相同的配置，但利用未经过标记的HH1(使用了 IOy g/ml)进行预处理。室温下，在PBS中将这些细胞孵育两小时，并且在一个Y计数器中进行计数，在ImlPBS中洗涤三次，之后离心，最后对细胞所结合的放射物进行再计数。结果在用利妥昔单抗进行预处理/共同处理的情况下，加入的125I-HHl中有26. 0% (总结合27. 4%-非特异性结合I. 4%)特异性结合于细胞。在不用利妥昔单抗进行预处理/共同处理的情况下，25. 5% (26. 9-I. 4)特异性结合(所有数字都表示三次平行实验的平均值)。也就是说，由于存在利妥昔单抗，使得125I-HHl的结合无明显差异。结论用过量的利妥昔单抗进行预处理和共同处理不会改变经过放射性标记的HHl的细胞结合能力，并且因此，不会阻止与CD37抗原的接近。 这表明，用经过放射性标记的HHl进行的放射免疫疗法可以适合于接受了或正在接受用抗CD20的抗体进行的免疫疗法的患者以及未用利妥昔单抗治疗过的患者。实例9-使用mLu-HHl治疗经静脉内接种了 Daudi淋巴瘤细胞的SCID小鼠。背景用当前针对CD20的放射免疫疗法来治疗淋巴瘤患者可能会因抗原漂移以及可能发生的⑶抗原阻断而为先前曾用利妥昔单抗治疗过的患者带来问题。因此，以其他抗原为目标的放射免疫疗法可能更有效。通过对重度联合免疫缺陷(severe combined immunedefCient，SCID)小鼠静脉内注射人类淋巴瘤细胞，建立一个静脉内肿瘤模型。当对SCID小鼠静脉内接种Daudi淋巴瘤细胞时，这些小鼠将会因Daudi肿瘤细胞的生长而发生后肢瘫痪。实验在给予50 或 100MBq/kg 177Lu-HHl、50 ii g HHl、50 ii g 利妥昔单抗或 NaCl 的前一周，对SCID小鼠静脉内注射一千万个Daudi细胞。每隔一周监测小鼠的后肢瘫痪情况和体重损失，以及WBS计数。使用无症状存活期中断作为终点。为了制备经过放射性标记的抗体，首先用p-SCN-Bn-DOTA对HHl进行标记，并且将其纯化。更换缓冲液后，将mLu(PerkinElmer, Boston, Ma, USA)加入D0TA-HH1中，并且在40° C下振荡40分钟。终产物的比活性为约3200MBq/mkg。将每一制剂溶解于等渗盐水中，达到每只动物IOOiU的总注射体积。结果中值无症状存活期对于盐水为26天(在21到33天的范围内)，对于HHl为40天(在23到44天的范围内)，并且对于利妥昔单抗为40天(在33到44天的范围内)(图8)。对于50kBq/kg mLu-HHl,在79天后有80%的动物仍存活。在100kBq/g组中有两只小鼠死亡于盐水组中任一动物之前,并且血细胞计数指示存在放射毒性。该100kBq/g组中三分之一的动物在第49天时死亡。其他动物(70%)在第79天时仍存活。用mLu-HHl治疗的小鼠的存活率明显高于用NaCl、HHl或利妥昔单抗治疗的小鼠的存活率(p〈0. 005, Mann Whitney时序测试)。结论数据显示，接受每克体重(b.w) 50或IOOkBq剂量mLu-HHl的各组的存活率明显优于接受盐水或者用HHl或利妥昔单抗进行的免疫疗法的组的存活率。毒性数据表明，活性应该保持每克体重小于100kBq。这些数据表明，177Lu-HHl具有相关的体内放射免疫疗法的特性。实例IO-mLu-HHl在带有表达⑶37的肿瘤异种移植物的裸小鼠中的生物分布。背景对经过镥-177标记的HHl抗体的体内组织分布和肿瘤靶向性进行评估。实验程序用放射性核素对抗体进行标记
首先用螯合剂p-SCN-Bn-DOTA对抗体进行标记。将DOTA溶解于0. 05M HCl中，将其按5 I的比率加入该抗体中，并且通过使用30kDa截留分子量的Amicon离心过滤管(Millipore, USA)，用碳酸盐缓冲液洗涤，将pH调到8_9。随后再次检查pH，并且在必要时加以调整。室温下，将该溶液振荡60分钟，随后通过加入50iU 200mM甘氨酸溶液(每毫克抗体)终止反应。为了除去游离的螯合剂，用PBS(PAA)(使用Amicon和离心法)将偶联的抗体洗涤4到5次，随后通过用乙酸铵洗涤调到PH5。接着，将 177Lu (Perkin Elmer, Boston, Ma, USA)与 0. 5mg DOTA-HHl 合并于一个 2ml 的聚丙烯管(Eppendorf, Germany)中，并且在40° C下振荡I小时。mLu-偶联物的比活性通常为 25_120MBq/kg。免疫活性使用淋巴瘤细胞和一种经过改进的Lindmo法来测量放射免疫偶联物的品质。所用细胞浓度为每毫升最多108个细胞。这些实验中使用的偶联物的免疫活性高于50%。放射免疫偶联物的生物分布对三周前植入了 I I Imm Daudi肿瘤异种移植物的雄性BALB/c裸(nu/nu)小鼠中177Lu-HHl的生物分布进行测定。通过对每只动物的尾静脉注射IOOiU溶液来给予这些制剂。对于mLu-HHl,每只小鼠的平均活性为500kBq。每一时间点使用四到五只动物。在注射后各个时间点，在实施颈椎脱白法后进行尸体解剖。测定每一组织样品的重量，并且利用一种经过校准的Y检测器(Cobra II自动Y检测器,Packard Instrument Company,Meriden, CT, USA)测量mLu。在这些测量程序中，使用注射物样品作为参照物。结果与讨论在带有Daudi异种移植物的BALB/c_裸(nu/nu)雌性小鼠的正常组织中标记有177Lu的HHl的摄取和保留度于图7中呈现。在放射免疫偶联物的初始摄取之后来自任何器官/加到任何器官的核素没有发生再分布的迹象，这表明这些放射免疫偶联物是稳定的。在带有肿瘤的裸小鼠中注射mLu-HHl显示，在骨骼中存在较少摄取。已知游离的177Lu积聚于骨骼中，因此这一结果表明，该放射免疫偶联物在体内是稳定的。在稍后时间点时，肿瘤中的摄取明显高于其他器官中的摄取。这表明，对于使用HHl抗体的放射免疫疗法，177Lu具有相关的半衰期。在表达⑶37的肿瘤异种移植物中mLu-HHl的生物分布数据显示出一种相关的正常组织摄取和清除以及显著的保留度。HHl抗体看起来特别适合放射免疫疗法。mLu-HHl偶联物看起来特别适合，因为在大部分放射性核素衰变前，获得了有利的肿瘤与正常组织之比。表格表I
多种放射免疫偶联物的免疫活性和比活性。
放射免疫偶联物 IRF1 (%)比活性1 (MBq/mg) 尹
验编号
125I-HH I66 士 17 (39-92) 75 土 15 (51-104)17
111In-HHl66- 14(51-78) 22± 12 (9-32)
3
177Lu-HHl5692I
125T-利妥昔单抗 62 士 6 (54-68) 69 ±30 (34-118)6
liiIn-利妥昔单抗 4516I
177Lu-利妥昔单抗 60137
I1平均值土标准偏差(范围)表2对于抗体利妥昔单抗和HHl，Raji、Rael和Daudi细胞上抗原的平均数目(Bmax)、平衡解离常数(Kd)和缔合速率常数(ka)。
抗体细胞系 Bmax (抗原/细胞) Kd (nM) ka
(nM/h)
HHlRaji 146 000 ±7 600 6.3 士 1.7 0.36 ±0.14
HHlRael 263 000 ± 27 000 12.7 ±5.5 0.07 ±0.01
HHlDaiidi 340 000 ± 5 000 2.7 ±0.3 0.72 ± 0.07
利妥昔单抗 Raji 272 000 士 69 000 4.8 土 0.9 0.08 士0.006
利妥昔单抗 Rael 626 000 ± 36 000 12.0 士 2.0 0.08 土
0.007表3
孵育2小时后每个Daudi细胞所结合的mLu原子数目。
权利要求
1.一种结合人类⑶37的放射免疫偶联物，包含 a)鼠类单克隆抗体HHl， b)一个连接子，以及 c)一种放射性核素，该放射性核素选自由以下各项组成的组，即177Lu、211At、213Bi、212Bi,212Pb, 225Ac, 227Th,90Y, 186Re, 188Re, 199Au, 194Ir, 166Ho, 159Gd, 153Sm, 149Pm, 142Pr, 111Ag, 109Pd,77As、67Cu 以及 47Sc。
2.根据权利要求I所述的结合CD37的放射免疫偶联物，其中该连接子是一种螯合性连接子。
3.根据权利要求I到2中任一项所述的结合CD37的放射免疫偶联物，其中该放射性核素是177Lu。
4.一种药物组合物，包含根据权利要求I到3中任一项所述的放射免疫偶联物和一种药学上可接受的载体。
5.根据权利要求4所述的药物组合物，另外包含一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物。
6.根据权利要求5所述的药物组合物，其中该一种或多种另外的抗体或放射免疫偶联物以CD20为目标。
7.根据权利要求4到6中任一项所述的药物组合物，用于对表达该⑶37抗原的B细胞恶性细胞进行治疗。
8.根据权利要求7所述的药物组合物，用于治疗非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病。
9.一种根据权利要求I到3中任一项所述的放射免疫偶联物的用途，用于治疗B细胞恶性肿瘤。
10.根据权利要求9所述的用途，其中该放射免疫偶联物是组合或连同另一种疗法一起给予的。
11.根据权利要求10所述的用途，其中该疗法选自预治疗、化学疗法、单克隆抗体疗法、手术、放射疗法和/或光动力疗法。
12.根据权利要求10或11所述的用途，其中该疗法包含在用根据权利要求I到3中任一项所述的放射免疫偶联物进行治疗之前，使用抗CD20和/或抗CD37的单克隆抗体进行预治疗。
13.一种用于对选自非霍奇金淋巴瘤和慢性淋巴细胞白血病的一种B细胞恶性肿瘤进行治疗的方法，包括给予一个有效量的根据权利要求4到8中任一项所述的药物组合物。
14.一种用于制备根据权利要求I到3中任一项所述的放射免疫偶联物的试剂盒，包含两个或更多个小瓶，其中一个小瓶含有一种偶联物，该偶联物包含与一种鼠类单克隆抗体HHl连接的一种螯合剂；并且一个第二小瓶含有一种放射性核素。
15.根据权利要求14所述的试剂盒，其中这些小瓶中一个或数个的内含物是经过冻干的或呈一种溶液的形式。
全文摘要
本发明涉及一种结合人类CD37的放射免疫偶联物。用于治疗癌症，特别是B细胞恶性肿瘤的多种药物组合物和其多种用途是本发明涉及的方面。
文档编号A61K51/10GK102762230SQ201180007272
公开日2012年10月31日 申请日期2011年1月28日 优先权日2010年1月29日
发明者奥伊温德·S·布吕兰, 约斯泰因·达勒, 罗伊·H·拉森 申请人:诺帝克纳诺维科特公司